一、實(shí)驗(yàn)原理

這種蛋白質(zhì)測(cè)定法是的方法之一.過去此法是應(yīng)用泛的一種方法,由于其試劑乙的配制較為困難,近年來逐漸被考馬斯亮蘭法所取代.此法的顯色原理與雙縮脲方法是相同的,只是加入了第二種試劑,即Folin—酚試劑,以增加顯色量,從而提高了檢測(cè)蛋白質(zhì)的靈敏度.這兩種顯色反應(yīng)產(chǎn)生深蘭色的原因是:在堿性條件下,蛋白質(zhì)中的肽鍵與銅結(jié)合生成復(fù)合物.Folin—酚試劑中的磷鉬酸鹽—磷鎢酸鹽被蛋白質(zhì)中的酪an酸和苯丙an酸殘基還原,產(chǎn)生深蘭色(鉬蘭和鎢蘭的混合物).在一定的條件下,蘭色深度與蛋白的量成正比。
    
Folin—酚試劑法由Lowry確定了蛋白質(zhì)濃度測(cè)定的基本步驟.以后在生物化學(xué)領(lǐng)域得到廣泛的應(yīng)用.這個(gè)測(cè)定法的優(yōu)點(diǎn)是靈敏度高,比雙縮脲法靈敏得多,缺點(diǎn)是費(fèi)時(shí)間較長(zhǎng),要精確控制操作時(shí)間,標(biāo)準(zhǔn)曲線也不是嚴(yán)格的直線形式,且專一性較差,干擾物質(zhì)較多.對(duì)雙縮脲反應(yīng)發(fā)生干擾的離子,同樣容易干擾Lowry反應(yīng).而且對(duì)后者的影響還要大得多.酚類、檸檬酸、硫酸銨、Tris緩沖液、甘an酸、糖類、甘油等均有干擾作用.濃度較低的尿素(0.5%),硫酸納(1%),硝酸納(1%),三(0.5%),乙醇(5%),(5%),丙酮(0.5%)等溶液對(duì)顯色無影響,但這些物質(zhì)濃度高時(shí),必須作校正曲線.含硫酸銨的溶液,只須加濃碳酸鈉—?dú)溲趸c溶液,即可顯色測(cè)定.若樣品酸度較高,顯色后會(huì)色淺,則必須提高碳酸鈉—?dú)溲趸c溶液的濃度1~2倍。
    
進(jìn)行測(cè)定時(shí),加F olin—酚試劑時(shí)要特別小心,因?yàn)樵撛噭﹥H在酸性pH條件下穩(wěn)定,但上述還原反應(yīng)只在pH=10的情況下發(fā)生,故當(dāng)Folin一酚試劑加到堿性的銅—蛋白質(zhì)溶液中時(shí),必須立即混勻,以便在磷鉬酸—磷鎢酸試劑 被破壞之前,還原反應(yīng)即能發(fā)生。
    
此法也適用于酪an酸和色an酸的定量測(cè)定。
    
此法可檢測(cè)的蛋白質(zhì)量達(dá)5mg.通常測(cè)定范圍是20~250mg。

二、試劑與器材

1、試劑
(1)試劑甲：
(A) 10克 Na2CO3,2克 NaOH和0.25克酒石酸鉀鈉 (KNaC4H4O6·4H2O).溶解于500毫升蒸餾水中.
(B) 0.5克硫酸銅(CuSO4·5H2O)溶解于100毫升蒸餾水中,每次使用前,將50份(A)與1份(B)混合,即為試劑甲.

(2)試劑乙：
在2升磨口回流瓶中,加入100克鎢酸鈉(Na2WO4·2H2O),25克鉬酸鈉(Na2MoO4·2H2O)及700毫升蒸餾水,再加50毫升 85%磷酸,100毫升濃鹽酸,充分混合,接上回流管,以小火回流10小時(shí),回流結(jié)束時(shí),加入150克 硫 酸鋰(Li2SO4),50毫升蒸餾水及數(shù)滴液體溴,開口繼續(xù)沸騰15分鐘,以便驅(qū)除過量的溴.冷卻后溶液呈黃色(如仍呈綠色,須再重復(fù)滴加液體溴的步驟).稀釋至1升,過濾,濾液置于棕色試劑瓶中保存.使用時(shí)用標(biāo)準(zhǔn)NaOH滴定,fen酞作指示劑,然后適當(dāng)稀釋,約加水1倍,使最終的酸濃度為1N左右。

(3)標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液：
精確稱取結(jié)晶牛血清清蛋白或 g—球蛋白,溶于蒸餾水,濃度為250 mg/ml左右.牛血清清蛋白溶于水若混濁,可改用0.9 % NaCl溶液。

2、器材
(1)可見光分光光度計(jì)
(2)旋渦混合器
(3)秒表
(4)試管16支

三、操作方法

1、標(biāo)準(zhǔn)曲線的測(cè)定：取16支大試管,1支作空白,3支留作未知樣品,其余試管分成兩組,分別加入0,0.1,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0毫升標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液(濃度為250mg/ml).用水補(bǔ)足到1.0毫升,然后每支試管加入5毫升試劑甲,在旋渦混合器上迅速混合,于室溫(20～25℃)放置 10分鐘.再逐管加入0.5毫升試劑乙(Folin—酚試劑),同樣立即混勻.這一步混合速度要快,否則會(huì)使顯色程度減弱.然后在室溫下放置30分鐘,以未加蛋白質(zhì)溶液的支試管作為空白對(duì)照,于700nm處測(cè)定各管中溶液的吸光度值.以蛋白質(zhì)的量為橫座標(biāo),吸光度值為縱座標(biāo),繪制出標(biāo)準(zhǔn)曲線。

注意：因Lowry反應(yīng)的顯色隨時(shí)間不斷加深,因此各項(xiàng)操作必須精確控制時(shí)間,即第1支試管加入5毫升試劑甲后,開始計(jì)時(shí),1分鐘后,第2支試管加入5毫升試劑甲,2分鐘后加第3支試管,余此類推.全部試管加完試劑甲后若已超過10分鐘,則第1支試管可立即加入0.5毫升試劑乙,1分鐘后第2支試管加入0.5毫升試劑乙,2分鐘后加第3支試管,余此類推.待支試管加完試劑后,再放置30分鐘,然后開始測(cè)定光吸收.每分鐘測(cè)一個(gè)樣品。
    
進(jìn)行多試管操作時(shí),為了防止出錯(cuò),每位學(xué)生都必須在實(shí)驗(yàn)記錄本上預(yù)先畫好下面的表格.表中是每個(gè)試管要加入的量(毫升),并按由左至右,由上至下的順序,逐管加入.最下面兩排是計(jì)算出的每管中蛋白質(zhì)的量(微克)和測(cè)得的吸光度值。

Folin—酚試劑法實(shí)驗(yàn)表格：
管號(hào) 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì) 0 0.1 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0(250mg/ml)
未知蛋白質(zhì) 0.2 0.4 0.6(約250mg/ml)
蒸餾水 1.0 0.9 0.8 0.6 0.4 0.2 0 0.8 0.6 0.4
試劑甲 5.0 5.0 5.0 5.0 5.0 5.0 5.0 5.0 5.0 5.0
試劑乙 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5 0.5
每管中蛋白質(zhì)的量(ug)
吸光度值(A700)

2、樣品的測(cè)定：取1毫升樣品溶液(其中約含蛋白質(zhì)20~250微克),按上述方法進(jìn)行操作,取1毫升蒸餾水代替樣品作為空白對(duì)照.通常樣品的測(cè)定也可與標(biāo)準(zhǔn)曲線的測(cè)定放在一起,同時(shí)進(jìn)行.即在標(biāo)準(zhǔn)曲線測(cè)定的各試管后面,再增加3個(gè)試管.如上表中的8、9、10試管。
    
根據(jù)所測(cè)樣品的吸光度值,在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出相應(yīng)的蛋白質(zhì)量,從而計(jì)算出樣品溶液的蛋白質(zhì)濃度。
    
注意：由于各種蛋白質(zhì)含有不同量的酪an酸和苯丙an酸,顯色的深淺往往隨不同的蛋白質(zhì)而變化.因而本測(cè)定法通常只適用于測(cè)定蛋白質(zhì)的相對(duì)濃度(相對(duì)于標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì))。